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黄瓜绿斑驳花叶病毒

黄瓜律能怀言加粒杨例绿斑驳花叶病来自毒,学名 Cucumber green mottle mosaic virus360百科,异名 Cucunber virus 3, Cucumis virus 2,英文名 例题盐犯笑简Cucumber g判张西们政reen mottle mosa封直ic virus。宽正值留是由Ains助土worth (1935答投财坐帮)首次记述, 在欧洲、印度和日本葫芦科植物上发房着白现的一种RNA病毒,病毒粒子细管状长度约300×18 nm. 病毒另切脸代易通过汁液传播,但病毒的寄主范围较窄,呢剧伯表线构念促前可通过树叶的接触,植物栽培中的操作,土壤及黄瓜种子传毒。

  • 中文名称 黄瓜绿斑驳花叶病毒
  • 外文名称  Cucumber green mottle mosaic virus
  • 发现时间 1935年
  • 发现者 Ainsworth
  • 寄生植物 黄瓜,西瓜和甜瓜

发生分布

  黄瓜绿斑驳花叶病毒病20世纪30年代在欧洲国家发生,60年代因黄、西瓜和瓠瓜而传入印度和日来自本,80年代传入衣火阶带著块击苗宁例台湾。2002年中国从日本引进种苗中截获,2004年厦360百科门从日本进口的南瓜种子上检测到CGMMV盐目架境重龙温若,2005年中国辽宁省盖州市感染CGMMV 在我国辽宁盖州地区造成西瓜大面积毁灭,受害面积达333 hm,约13hm绝收,CGMM止明些息标上V 现在中国部分地区已造成西瓜毁灭性的损失。农业部发布的第788 号公告,郑重宣布将CGMMV 仍牛晚热侵提甲确定为全国农业植物检疫性有害生物,属国家三类检疫性病害。

  目前,CGMMV 在全球主要分布在希腊( 克里特岛)、罗马尼亚、中国台湾、巴西( 香儿短田镇活晚翻误卷Sao Francisco 地区)、

  前苏联、日本、伊朗、丹麦、印度( Delhi)、芬兰、德国、英国、沙特阿拉伯、韩国、以色列、波兰;在中国主要分布于辽宁、河北、湖北、广东和山东,发生协调绝吃率达80%,河南、四川、江西、上海、新书黑树达越夜练格疆、陕西及宁夏等省份还未发现。

典型症状

支买  CGMMV侵染植物产生的症状因寄主、环境条件及株系的不同而有差异,一般会使葫芦科作物的植株生长缓慢、矮化,结果延迟,严重的导散吧场吸致不孕;叶片出现色斑、水疱及变形;果实外部通常没有症状或出现色斑,内部果肉往往出现变色、纤维化及腐烂;有的病株不出现症状而表现为无下容若跳白症侵染。

  西瓜感染病原剧曲毒症状

  在植株的幼叶出妒制切假氢读鲁素金现不规则的褪绿色或淡黄色发领,呈斑驳花叶状,使绿色部分隆起今外致概汽续容不叶面凸凹不平,叶缘向上翻卷,叶片略变研西察钱校连铁践派窄细。叶片老化后症状逐渐不明显,与健叶无大区别。套量临医紧病果表面出现浓绿色略圆的斑纹,有时在中央出现坏死斑。果梗再现褐色坏死态诗条纹。果肉周边接近果皮部呈黄色水渍状,进而种子周围的果肉变紫红色或暗红色水渍状,果肉内出现块状黄色纤维,逐渐成为空洞。成熟果果肉全变成暗红色,内有大量空洞呈丝瓜瓤状,软化,腐烂变味,不能食用。

  甜瓜感染病毒症状

  生长初期接种后7d~10d,顶部第3片~4片幼叶出现黄色斑或花叶,远看顶部附近呈黄色,以后展开的3片~4片叶症状反而减轻,再后的3片~4片叶又出现黄花叶,不断变化。成株侧枝叶出现不整形或星状黄花叶,生育后期顶部叶片有时再现大型黄色轮斑。果实有两类症状,一种在幼果再现绿色花叶,肥大后期呈绿色斑。另一种在绿色部的中心出现灰白色部分。

  黄瓜感染病毒症状

  开始在新叶出现黄色小斑点,以后黄色部分扩展成花叶,并发生浓绿瘤状突起,有时黄色小斑点沿叶脉扩展成星状,或脉间褪色出现叶脉绿带。果实在病轻时只发生淡黄色圆形小斑点,病重时出现浓绿色瘤状突起变成畸形,严重时可以造成绝产。

寄主植物

  自然界寄主:

  黄瓜,西瓜和甜瓜(Cucumis 来自melo)作物,不能侵染西葫芦(Cucurbita pepo),在葫芦(Lagenaria siceraria)上也有发现。

  大多数英国株系只侵染葫芦科植物(Cucurbitaceae);日本和印度的有些株系和差十叶革态树英英国分离的一个株系能在苋色藜(Chenopodium amara期显犯nticolor)和/或曼陀罗(Datura stramonium)上产生局部枯斑(Komuro et al., 1971; Tochihara & Komuro, 1974)。东欧的桃叶珊瑚分离物能够在三生烟,珊西烟(Brcák et al., 1962)上产生局部褪绿斑,在昆藜上产生系统斑纹。

  鉴别寄主:

  没有特别的鉴别寄主,对于某些株系音缺掉概方演发曾感调鉴定来说,血清学测试和电镜观察是必需的。

  黄瓜(Cucumis sativus)-抗病。无局部症状;接种2星期后产生轻微的明脉,继而出现明亮绿黑色斑纹,水泡,叶片畸形(特别是在冬有京括却天),植株矮化。

  苋色藜(Chenopodium amaranticolor)-经西瓜株系、Yodo株系和印度C株系(Tochih来聚兵掉市得ara & Komuro, 1974)侵染后出现细小局部坏死斑,而欧洲黄瓜株系不出现这种症状;无系统侵染。

  曼陀罗(Datura stramonium)-Yodo株两留盾存系和日本的黄瓜株系在接种后1星期产生能扩散的局部褪绿斑;无系统侵染。

  毒源繁殖保存寄主:

  黄瓜是病毒繁殖与保存的优良寄主,但毒源最好是-20℃叶片冻存或汁液冻出培积配素存。

  测定寄主:

  对大多数株系来说没有非常满意的测担升极云血鲁胡半临概族定寄主,但对于日本黄瓜株系来说,曼陀罗(Datura stramonium喜于)是最好的鉴别寄主;苋色藜可以作为日本Yodo株系与西瓜株系及印度C株系的测定寄主(Tochihara & Komuro360百科, 1974)。

  株系:

 守医推失协 有些株系可以用血清兴动风知承程者虽齐属学方法或在苋色藜(C. amaranticolor)和曼陀罗(D. stramonium)上的症状反应来区分(Tochihara & Komuro, 1974)。

  主要株系:

  典型株系(Ainsworth, 1935)-黄瓜绿色斑驳花叶病毒(Cucumber green mottle mosaic virus),在欧洲和英国报道,在果实上不出现症状,某些条件下在苋色藜上出现一些枯斑;不侵染曼陀罗(Datura stramonium)和矮牵牛(Petunia hybrida)。

  黄瓜桃叶珊瑚花叶病毒(C职牛思龙右零威尔ucunber aucu打送历毛世视钱块ba mosaic virus)(Bewley, 1923)-=Cucumber virus 4(Ainsworth, 1935) = Cucumis virus 2A (Smith, 1957).在英国和欧洲报道,印度也有类似报道(Vasudeva et al., 19听伟肥按任改探何吗曲参49)。在果实上诱发显症,苋色藜上出现局部枯斑,但不在曼陀罗(Datura stramonium)上引发枯斑

  西瓜株系(Watermelon strain)-在日同烈本报道(Komuro e宪脚到春城合今力燃记盐t al., 1971)。苋色藜上出现局部枯斑模音倍群卫易短花若衣练,但不在曼陀罗(Datura stramonium)上引发枯斑。

  日本黄瓜株系(Japanese cucumber strain)-在日本报道(Komuro et al., 1971)。在黄瓜上导致严重的果实变形,在曼陀罗(Datura stramonium)引发局部枯斑,但在苋色藜(C. amaranticolor)不引发局部枯斑。

  Yodo株系(Yodo strain)-在日本Yodo报道(Kitani et al., 1970; Tochihara & Komuro, 1974).,在黄瓜上导致果实扭曲,在苋色藜,曼陀罗和矮牵牛(Petunia hybrida)上产生局部枯斑。

  印度C株系(Indian strain C)-在印度bottlegourd中分离(Vasudeva et al., 1949),产生水泡状色斑,矮缩及减产;在苋色藜C. amaranticolor上引发局部枯斑,曼陀罗D. stramonium上为隐症,不侵染烟草和矮牵牛(Petunia hybrida)。

形态特征

  病毒粒子特性:

  沉淀系数(s°20,w):185 S,195 S (Brcák et al., 1962) ;

  等电点:pH:4.98(Oster, 1951; Brcák et al., 1962);

  A260/A280: 1.38. Amax(260)/Amin(249): 1.05. (Values corrected for light-scattering; M. Hollings, unpublished data).

  病毒粒子结构:

  直形棒状,300×18nm,一个螺旋23?,半径20 ?,RNA位于距中心40 ?处,一个螺旋由49个亚单位或3个转角组成(Holmes & Franklin, 1958)。

  病毒粒子组成:

  核酸:

  单链线性RNA,基因组长度6.5kb,基因组为单一组分,碱基比:G:A:C:U=25:26:19:30(Linnasalmi & Toiviainen, 1974), 占粒子重的6%(Knight, 1954)。基因组不带Poly(A)尾巴,而具有tRNA-like结构。

  GenBank登录号:

  D12505 Em(40)_vi:MCGSHCG Gb(84)_vi:MCGSHCG 黄瓜绿斑驳花叶病毒(CGMMV) 全长基因组. 10/92 6,421bp.

  J02054 Gb(84)_vi:MCGCPW 黄瓜绿斑驳花叶病毒外壳蛋白基因. 9/83 1,071bp.

  J04322 Em(40)_vi:TOBMCG30 Gb(84)_vi:MCG30KP 黄瓜绿斑驳花叶病毒30K蛋白全长基因,180K 蛋白和外壳蛋白基因3个序列.

  蛋白:

  占粒子重的94%,三个黄瓜分离物,每个都含有15个氨基酸,平均160个残基/亚单位,分子量17.2kDa(Linnasalmi & Toiviainen, 1974),三个欧洲的黄瓜分离物的氨基酸组成与西瓜分离物(Nozu et al., 1971)及CV-4分离物(桃叶珊瑚花叶病毒)(van Regenmortel, 1967)很相似,而黄瓜桃叶珊瑚花叶分离物与以上分离物的氨基酸组成有些差异(Tung & Knight ,1972; Linnasalmi & Toiviainen , 1974).

生物学

  血清学及亲缘关系:

  病毒具有很强的抗原性。与其他烟草花叶病毒属(tobamovirus)出现的症状形态学上类似,血清学上也相关。西瓜株系与英国的两个株系及印度的C株系有较近的亲缘关系,但与日本的黄瓜株系、Yodo株系及烟草花叶病毒却有较远的亲缘关系,而与番茄花叶病毒及烟草花叶病毒属的其他成员的亲缘关系更远(Nozu et al., 1971; Tochihara & Komuro, 1974; van Regenmortel, 1975; M. Hollings, unpublished data).。日本黄瓜株系与Yodo株系的亲缘关系很近。

  汁液稳定性:

  所有株系都是极端稳定的。典型株系90℃处理10min失去侵染能力 (Smith, 1957),黄瓜株系与yodo株系的致死温度为90-100℃(Kitani et al., 1970; Nagai et al., 1974),印度C株系为86-88℃(Vasudeva et al., 1949)。病毒汁液稀释限点为10-6-10-7(Nagai et al., 1974).,常温下病毒侵染力可保持数月,在0℃可保持数年。

传播途径

  介体传播:

  桃蚜(Myzus persicae)和棉蚜(Aphis gossypi)i(Inouye et al., 1967a), 或黄瓜叶片甲虫不传毒(Nagai et al., 1974),带病残留物可经土壤传播至根部(Inouye et al., 1967b; Nagai et al., 1974),但可以通过溴化甲烷对土壤进行熏蒸而防止病毒的侵染(Inouye et al., 1967c);植物之间的接触能进行传毒。

  种传:

  在黄瓜上,种子丰收后一个月种子传毒效率为8%,保存5个月则下降至1%seed (van Koot & van Dorst, 1959)。种传也出现在bottlegourd中,在西瓜中高达5%,虽然病毒在种子中不能检测到(Komuro et al., 1971; Nagai et al., 1974)。种子污染大多是外部因素引起的,并可以通过干热处理(70℃处理3天)减轻种子传毒而不影响种子的发芽率(Fletcher et al., 1969; Nagai et al., 1974)。

  菟丝子传:

  黄瓜绿色斑驳花叶病毒可以经Cuscuta subinclusa, 啤酒花菟丝子(C. lupuliformis)和C. campestris传毒(Schmelzer, 1956),,黄瓜桃叶珊瑚花叶病毒可经C. campestris传毒(Johnson, 1941).

检测方法

  田间调查时,主要检查叶片、果梗、果实,观察是否出现病毒危害症状。实验室检测常用生物学鉴定(苋色藜-枯斑反应)、血清学鉴定、分子生物学鉴定(PCR扩增、核酸斑点杂交制备)、电镜法进行检测。

检疫防治

  对CGMMV 的防治同其他病害一样, 最根本的要使用无侵染的种苗; 在农事操作中尽量避免病毒经器械等传播, 加强栽培管理, 及时拔除初侵染病株, 销毁病株残体。

  1.检疫处置:拔除病株并集中销毁、土壤消毒和轮作等, 采取这些措施后一般可认为已完成了疫情的处置。其中国内研究表明经焚烧深埋10 个月后的土壤或病残体样本仍可能被检测到CGMMV 核酸的存在, 但已无侵染活性。

  2.种子处理:根据国内对带毒砧木进行药剂消毒、干热处理、干热处理结合药剂消毒、温汤浸种、温汤浸种结合药剂消毒等五种种子处理方法的研究:其中干热处理结合药剂消毒的防效最好, 为100%, 发芽率85.2% , 明显优于其他处理及对照; 其次是干热处理(40C、24h后72C、72h),防效为93. 46%,发芽率85.6%;温汤浸种结合药剂消毒,防效为80. 47%,发芽率87.8%;药剂消毒(10%磷酸三钠溶液浸泡20~ 30min),防效为73. 93%,发芽率90.3%;温汤浸种(55C,1min),防效为58. 20%,发芽率93.7%。

  3.抗病育种:选育抗病品种是行之有效的途径, Visser 等通过Cucumis angur ia L. 和C. z eyheri Sond 种间杂交选育抗病品种;Daryono 等采用RAPD 技术对melon 栽培品种的抗CGMMV 基因进行标记, 进行抗病育种;More 等已育成甜瓜抗病品种VRM5 -10, VRM29- 1, VRM31- 1, VRM31- 2, VRM42- 4 and VRM43- 6。 4.生物防治:许多生物防治研究已开展, Motoyoshi 等采用弱毒株系( SH33b) 对甜瓜进行交互保护试验; 黄细心Boer havia dif f usa 根部提取物或分离的糖蛋白可防治CGMM- V 在甜瓜上的侵染 ;Pseuderanthemum bicolor 叶片水提取物可防治CGMMV 在Cucumis melo var . momordica 上的侵染;叶子花叶片水提取物也可防治CGMMV 在西红柿、甜瓜和菽麻等一些重要经济植物上的侵染;商陆丙酮提取物、KR- 070( 一种菌类多聚糖) 、麦仙翁提取物对防治CGMMV 都有效果;将13 种厥类植物的提取液在Cucur bita p epo cv . Caserta 上进行体外抑制CGMMV活性试验,最高抑制率可达90%。

危害情况

  在黄瓜(Cucumis sativus)上产生的典型症状为叶片上出现色斑,水泡及变形,植株矮化,产量损失达15%(Fletcher et al., 1969);受感染的果实通常没有症状,但有些株系能够使果实导致严重的色斑和变形 (Inouye et al., 1967a),有些亚洲株系在叶片上并不出现症状但是却能造成产量下降(Smith, 1957).。

  桃叶珊瑚花叶病毒侵染黄瓜产生叶片亮黄斑驳,新叶微有变形和矮化;果实出现黄化或出现银白色的条纹斑,特别是在高温下容易出现这种症状(Komuro et al., 1971)。

  在西瓜上(Citrullus vulgaris)叶片只产生轻微的斑纹和矮化,但在果实中却造成严重的变色或使果实内部造成腐烂。

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